煙草鳶尾絲囊霉菌的生物學特性及分子檢測

李小杰，劉劍君，白靜科，劉 暢，陳玉國，苗 圃，邱 睿，陸施羽，李淑君*

煙草鳶尾絲囊霉菌的生物學特性及分子檢測

李小杰1，劉劍君2，白靜科1，劉 暢1，陳玉國1，苗 圃3，邱 睿1，陸施羽1，李淑君1*

（1.河南省農業科學院煙草研究所，煙草行業黃淮煙區煙草病蟲害綠色防控重點實驗室，河南 許昌 461000；
2.中國煙草總公司河南省公司，鄭州 450046；
3.河南省煙草公司洛陽市公司，河南 洛陽 471000）

針對近年來河南省許昌、洛陽、三門峽等部分煙區煙草漂浮苗鳶尾絲囊霉根腐病發生較重的問題，采用菌絲生長速率法初步分析了病原菌的生物學特性，并根據NCBI數據庫中鳶尾絲囊霉菌代表菌株CBS 524.87的5個編碼基因CDS序列，設計篩選鳶尾絲囊霉菌的特異性擴增引物并應用。生物學特性分析結果表明，在PDA培養基上，鳶尾絲囊霉菌菌絲生長的適宜溫度為25～35 ℃，致死溫度為50 ℃，處理10 min；
生長適宜pH為4.0～8.0，最適pH為6.0；
連續光照條件有利于菌絲生長。篩選獲得了特異性擴增鳶尾絲囊霉菌的引物對7個，對于基因組DNA擴增的靈敏度約為0.182 ng/μL；
利用特異引物AiT3分別對接種育苗基質和煙苗進行分子檢測，可特異性的檢測出鳶尾絲囊霉菌，檢測的靈敏度分別為每克基質含菌量為2.5×10-2g病原菌菌絲和0.5 ng/μL煙苗根系基因組DNA。本研究為鳶尾絲囊霉菌的快速分子檢測提供了技術支撐，對苗期鳶尾絲囊霉根腐病病原的準確識別和預測預報提供了依據。

煙草；
鳶尾絲囊霉；
生物學特性；
特異引物；
分子檢測

絲囊霉（）屬鞭毛菌亞門真菌，是卵菌綱、水霉目、水霉科中的一屬，由絲囊霉屬真菌引起的植物病害在國內外均有報道[1-8]。由鳶尾絲囊霉（）引起的煙草漂浮苗根腐病是煙草上的一種新病害[9]，近年來在河南省許昌、洛陽、三門峽等煙區苗床發生較重。目前對該病害及其病原菌的認識水平有限，還不能準確識別并進行及早診斷，導致防治效果不佳，嚴重影響煙苗質量，給煙草生產帶來較大威脅。目前對該病害的檢測還停留在傳統的病害診斷方法，還未見有關鳶尾絲囊霉分子檢測的研究報道。利用PCR及其相關聯的RT-qPCR、LNA-qPCR、巢氏PCR等分子技術對植物病害病原菌進行檢測的研究報道目前已較多[10-12]，其中設計特異性引物是分子檢測的關鍵，肖艷松等[13]以煙草靶斑病菌rDNA-ITS序列為靶標，設計特異性引物Rs-1，建立了靶斑病菌的特異性PCR檢測體系；
封松利等[14]根據煙草黑脛病菌rDNA-ITS序列，篩選出兩對檢測引物YYI-F/R和YYH-F/R，能特異性擴增標靶病原菌；
李小杰等[15]采用RAPD方法篩選獲得了6對可用于煙草青枯病菌PCR檢測的特異性引物。

本研究擬對煙草漂浮苗根腐病病原菌鳶尾絲囊霉進行生物學特性分析，篩選特異性擴增引物并對其進行分子檢測，以期為病害的早期快速診斷及預測預報提供理論依據。

1.1 供試菌株

病原菌鳶尾絲囊霉菌（）YW-1由河南省農業科學院煙草研究所植物保護研究室提供并保存。

1.2 鳶尾絲囊霉菌YW-1的生物學特性測定

1.2.1 溫度對菌絲生長的影響 參照文獻[16]方法，將鳶尾絲囊霉菌餅分別置于25、35、40、45、50 ℃的水浴中加熱10 min，接種至PDA平板中央，置于25 ℃光照培養箱中培養，同時以25 ℃恒溫培養的鳶尾絲囊霉菌為對照處理，3 d后利用十字交叉法測量各處理的菌落直徑。每個處理設置3個重復，每個重復接種3皿。

1.2.2 pH對菌絲生長的影響 參照文獻[16]方法，調節PDA培養基pH至4、5、6、7、8、9、10、11、12，將直徑為5 mm的鳶尾絲囊霉菌餅接種至不同pH的平板中央，置于25 ℃光照培養箱中培養，3 d后利用十字交叉法測量各處理的菌落直徑。每個處理設置3個重復，每個重復接種3皿。

1.2.3 光照時間對菌絲生長的影響 參照文獻[16]方法，將直徑為5 mm的鳶尾絲囊霉菌餅接至PDA平板中央，將平板置于人工氣候培養箱中，25 ℃條件下分別進行連續光照、12 h光照/12 h黑暗、連續黑暗的培養，3 d后利用十字交叉法測量各處理的菌落直徑。每個處理設置3個重復，每個重復接種3皿。

1.3 鳶尾絲囊霉菌特異引物設計、篩選與擴增

按照真菌基因組DNA提取試劑盒（Order NO. B518259）說明書方法操作，提取鳶尾絲囊霉菌基因組DNA。從NCBI數據庫中下載鳶尾絲囊霉菌代表菌株CBS 524.87的5個編碼基因CDS序列（表1），通過Primer-Blast設計鳶尾絲囊霉菌特異引物，引物合成由生工生物（上海）完成。分別以鳶尾絲囊霉菌（）、煙草疫霉菌（）、煙草交鏈孢菌（）、煙草立枯絲核菌（）、煙草膠孢炭疽菌（）、煙草擬莖點霉菌（sp.）和煙草尖孢鐮刀菌（）等7種供試煙草病原菌以及貝萊斯芽孢桿菌Ba-0321的基因組DNA為模板，利用PCR技術篩選出能夠特異性擴增鳶尾絲囊霉菌的引物。PCR反應體系：2×Taq PCR Mix 12.5 μL，10 μmol/L正、反向引物各1 μL，基因組DNA 1 μL為模板，超純水補足至25 μL。PCR擴增條件為：95 ℃預變性5 min；
94 ℃變性45 s，59 ℃退火30 s，72 ℃延伸45 s，30個循環；
72 ℃延伸8 min；
4 ℃保存。PCR反應結束后，取5 μL擴增產物于1.5%的瓊脂糖凝膠中電泳，在BIO-RAD凝膠成像系統上觀察、拍照?；厥誔CR擴增條帶，送至生工生物進行測序。

1.4 特異引物檢測的靈敏度測定

以鳶尾絲囊霉菌基因組DNA為模板（模板濃度為18.2 ng/μL），并將模板進行101、102、103、104、105、106、107倍稀釋。分別吸取1 μL DNA為模板，利用特異引物進行PCR擴增，并進行電泳檢測。PCR反應體系和程序同1.3。

表1 鳶尾絲囊霉菌編碼基因名稱及大小

1.5 接種基質中鳶尾絲囊霉菌的分子檢測

將鳶尾絲囊霉置于PDA培養基上，于25 ℃培養箱中培養3 d，將10 g菌絲刮至40 mL無菌水中進行勻漿，以該勻漿液為原液，依次進行10倍梯度稀釋，分別得到10-1、10-2、10-3、10-4、10-5、10-6、10-7稀釋液。分別吸取10 mL梯度稀釋液加入10 g過篩的滅菌基質中，以加無菌水的基質作為空白對照。稱取400 mg基質樣品，加入等量石英砂，放入自動研磨儀（BIO-DL Easy Extct P型）進行樣品的預處理，參照FastDNA? Spin Kit for Soil說明書提取樣品總DNA作為模板，利用篩選出的特異引物進行PCR擴增。

1.6 接種煙苗中鳶尾絲囊霉菌的分子檢測

采用水培接種法，將生長至4～5片葉的煙苗置于盛有無菌水的50 mL滅菌離心管中，每管放置1株煙苗，以浸沒整個根系。緩苗1 d后，每株煙苗根系部位接種一塊直徑為5 mm的鳶尾絲囊霉菌菌餅，以空白PDA瓊脂塊為對照處理，每個處理設置3個重復，每個重復接種5株煙苗。分別于接種后1、2、3 d取樣檢測，具體方法為：將煙苗取出，無菌水沖洗干凈后用滅菌濾紙吸干水分，各截取煙苗接種部位的根系0.1 g，利用植物基因組DNA提取試劑盒（CW0531M，康為世紀）提取各處理樣品基因組DNA，利用鳶尾絲囊霉菌特異引物進行PCR擴增及靈敏度測定。

1.7 數據分析

利用Excel軟件對數據進行統計分析，利用DPS 7.05軟件進行差異顯著性檢驗，采用Duncan新復極差法進行多重比較。

2.1 鳶尾絲囊霉菌YW-1的生物學特性

試驗結果表明（圖1），隨著溫度的升高，鳶尾絲囊霉菌的生長受到不同程度的抑制。在25～35 ℃之間，鳶尾絲囊霉菌良好生長，處理間無顯著差異；
超過40 ℃時，菌株生長開始受到抑制，超過50 ℃時，菌株菌絲生長受到完全抑制，菌落直徑幾乎為0，說明鳶尾絲囊霉菌的致死溫度為50 ℃。pH 4.0～8.0范圍內，菌株菌絲生長較快，其中pH 6.0時生長最快，pH 9.0～13.0時，菌絲生長逐漸變慢，說明鳶尾絲囊霉菌適宜在偏酸和中性環境中生長（圖2）。菌株菌絲生長受光照時間的影響較大，在連續光照條件下生長最快，菌絲直徑達7.48 cm，顯著高于連續黑暗、12 h光照/12 h黑暗交替處理，說明光照時間越長越有利于該菌株的生長（圖3）。

注：圖中不同小寫字母表示p＜0.05水平差異顯著；
不同大寫字母表示p＜0.01水平差異顯著。下同。

圖2 不同pH條件下鳶尾絲囊霉菌絲的生長測定

圖3 不同光照條件下鳶尾絲囊霉菌絲的生長測定

2.2 鳶尾絲囊霉菌的特異引物篩選及靈敏度分析

根據鳶尾絲囊霉菌代表菌株strain CBS 524.87的5個編碼基因CDS序列，通過NCBI數據庫中的Primer-Blast設計出鳶尾絲囊霉菌特異引物7對（表2）。特異性檢測結果表明，設計出的7對特異引物均能特異性擴增出鳶尾絲囊霉菌，且條帶明亮單一，無雜帶（圖4）。序列分析結果表明，這7個特異引物對擴增出的DNA片段序列只與NCBI數據庫中CBS 524.87的5個編碼基因的序列相似性在97%以上，由此表明，所篩選出的7對引物均可用于特異性檢測鳶尾絲囊霉菌。

利用篩選出的7個特異引物對，分別以梯度稀釋的鳶尾絲囊霉菌基因組DNA為模板進行PCR擴增。結果表明，特異引物AiT1～AiT7檢測的靈敏度均可達到10-2的稀釋度，即約0.182 ng/μL，其中特異引物AiT3擴增的條帶更亮更單一（圖5），因此以下試驗均選用該引物進行鳶尾絲囊霉的PCR擴增。

2.3 接種基質中鳶尾絲囊霉菌的分子檢測

分別從每克基質含菌量為0.25、0.25×10-1、0.25×10-2、0.25×10-3、0.25×10-4、0.25×10-5、0.25×10-6、0.25×10-7g菌絲的基質中提取總DNA，并取1 μL DNA為模板進行特異引物的PCR擴增，結果表明，利用特異引物AiT3可對基質中鳶尾絲囊霉菌進行分子檢測，且檢測的靈敏度約為每克基質含菌量2.5×10-2g菌絲（圖6）。

表2 鳶尾絲囊霉菌的特異引物序列

注：M，DL2000 DNA Marker；
編號1～8、9～16、17～24、25～32、33～40、41～48、49～56分別為特異引物AiT1、AiT2、AiT3、AiT4、AiT5、AiT6、AiT7的PCR擴增，模板分別為煙草交鏈孢菌、煙草尖孢鐮刀菌、煙草立枯絲核菌、煙草疫霉菌、鳶尾絲囊霉菌、煙草膠孢炭疽菌、煙草擬莖點霉菌、貝萊斯芽孢桿菌Ba-0321基因組DNA。

2.4 接種煙苗中鳶尾絲囊霉菌的分子檢測

接種鳶尾絲囊霉菌YW-1后1 d，煙苗未表現出發病癥狀。接種后2 d，煙苗根系出現輕微變褐，但葉片健康且未萎蔫。接種后3 d，煙苗根系嚴重變褐且出現腐爛現象，葉片變黃萎蔫（圖7a、b）。利用特異引物AiT3進行PCR擴增，結果表明，接種后1 d在接種煙苗根系和空白對照中均未檢測出鳶尾絲囊霉菌，接種2 d后，在接種煙苗根系中均能夠檢測出鳶尾絲囊霉菌，而對照中均未檢測出該病原菌（圖7c）。分別以梯度稀釋的煙苗根系基因組DNA為模板進行PCR擴增，結果表明，特異引物AiT3檢測的靈敏度可達到10-2的稀釋度，即約0.5 ng/μL（圖7d）。以上結果說明，篩選出的特異引物AiT3可用于煙苗組織中鳶尾絲囊霉菌的快速檢測。

注：M，DL2000 DNA Marker；
編號1～8、9～16、17～24、25～32、33～40、41～48、49～56分別為特異引物AiT1、AiT2、AiT3、AiT4、AiT5、AiT6、AiT7的PCR擴增，模板分別為鳶尾絲囊霉菌基因組DNA的10、10-1、10-2、10-3、10-4、10-5、10-6、10-7稀釋液。

注：M，DL2000 DNA Marker；
編號1～9分別為空白對照、每克基質含菌量為0.25、0.25×10-1、0.25×10-2、0.25×10-3、0.25×10-4、0.25×10-5、0.25×10-6、0.25×10-7 g菌絲的基質總DNA。

注：a，接種鳶尾絲囊霉菌后3 d煙苗及根系發病情況；
b，空白對照；
c，泳道1、3、5為空白對照，2、4、6分別為接種后1、2、3 d；
d，泳道1～8分別為煙苗根系基因組模板DNA的10、10-1、10-2、10-3、10-4、10-5、10-6、10-7稀釋液；
M為DL2000 DNA Marker。

目前國內外關于植物病原絲囊霉菌生物學特性的研究報道較少，李敏權等[8]研究表明甜菜黑腐絲囊霉（）在PDA培養基上的最適生長溫度為25～27 ℃，33 ℃為其致死溫度，最適pH為5.0～9.9；
唐德志等[17]報道了豌豆絲囊根腐霉（）菌絲在CMA培養基上的生長適溫為28～32 ℃，40 ℃不能生長；
有研究發現，鳶尾絲囊霉（）卵孢子在玉米粉湯（CMD）或福氏定殖液（FDL）培養基上的最適萌發溫度為25 ℃，最適pH為6.4，但未報道其致死溫度[18]。本研究表明引起煙草漂浮苗根腐病的鳶尾絲囊霉菌在PDA培養基上的適宜生長溫度為25～35 ℃，致死溫度為50 ℃，高于已報道的其他絲囊霉屬真菌的致死溫度，這可能與菌種或使用的培養基不同有關。鳶尾絲囊霉菌生長適宜的pH在4.0～8.0之間，表明該菌比較適宜在偏酸和中性環境中生長，與前人研究基本一致[8,18]。

本研究首次利用生物信息學和分子生物學方法設計并篩選出能夠特異性擴增鳶尾絲囊霉菌的引物對7個，靈敏度可達0.182 ng/μL鳶尾絲囊霉菌基因組DNA。篩選出的特異引物可用于育苗基質和煙草組織中鳶尾絲囊霉菌的快速分子檢測，檢測的靈敏度分別為每克基質含菌量為2.5×10-2g病原菌菌絲和0.5 ng/μL煙苗根系基因組DNA，該研究結果為煙草鳶尾絲囊霉的快速分子檢測提供了基礎和技術支撐，彌補了絲囊霉分子檢測的空白。有研究表明，影響PCR檢測靈敏度的因素有靶序列的拷貝數、模板的純度、PCR反應體系等[19]，在模板量相同的情況下，高拷貝片段相對于單拷貝更易擴增出來，且模板的純度越高、質量越好，擴增的靈敏度也就越高。因此，下一步將對PCR擴增模板、反應體系等條件進行優化，以提高對鳶尾絲囊霉分子檢測的靈敏度。同時研究定量PCR技術在該病害分子檢測中的應用，從而實現對該病害發生與流行的準確預測預報。

本研究針對近年來河南省許昌、洛陽、三門峽等煙區煙草漂浮苗鳶尾絲囊霉根腐病發生較重的問題，明確了病原鳶尾絲囊霉菌的最適生長溫度為25～35 ℃，致死溫度為50 ℃，最適pH為6.0。設計并篩選出特異性擴增鳶尾絲囊霉菌的引物對7個，建立了鳶尾絲囊霉菌的分子檢測技術，靈敏度可達0.182 ng/μL病原菌基因組DNA，實現了對育苗基質和煙苗中鳶尾絲囊霉的快速檢測，為煙草苗期鳶尾絲囊霉根腐病病原的準確識別和預測預報提供了重要依據。

[1] WEIMER J L. Root rot of austrian winter peas and vetches[J]. Phytopathology, 1940, 30(8): 708-711.

[2] ICHITANI T, KODAMA T, HORIMOTO K, et al.sp. nov. causing Aphanomyces basal rot of Dutch iris in Japan[J]. Annals of the Phytopathological Society of Japan, 1986, 52(4): 590-598.

[3] JONES F R, DRECHSLER C. Root rot of peas in the United States caused by(N. sp.)[J]. Journal of Agricultural Research, 1925, 30: 293-325.

[4] WICKER E, MOUSSART A, DUPARQUE M, et al. Further contributions to the development of a differential set of pea cultivars () to investigate the virulence of isolates of[J]. European Journal of Plant Pathology, 2003, 109(1): 47–60.

[5] 陳慶河，翁啟勇，何玉仙，等. 福建省豌豆根腐病病原及致病性研究[J]. 福建農業學報，2004，19（1）：28-31.

CHEN Q H, WENG Q Y, HE Y X, et al. Pathogeny and pathogenicity of root disease of peas in Fujian province[J]. Fujian Journal of Agricultural Sciences, 2004, 19(1): 28-31.

[6] 刁治民. 青海豌豆根腐病病原菌種類及致病性的研究[J]. 微生物學雜志，1996（1）：31-34.

DIAO Z M. Study on the pathogen and pathogenicity of root disease of peas in Qinghai[J]. Journal of Microbiology, 1996(1): 31-34.

[7] 唐德志，何蘇琴，李玉奇，等. 甘肅豌豆根病的病原菌種類及致病力研究[J]. 西北農業學報，1993，2（2）：37-39.

TANG D Z, HE S Q, LI Y Q, et al. Study on the pathogen and pathogenicity of root disease of peas in Gansu[J]. Acta Agriculturae Boreali-Occidentalis Sinica, 1993, 2(2): 37-39.

[8] 李敏權，林淑潔，徐秉良，等. 影響甜菜黑腐絲囊霉的幾種生態學和生物學因子[J]. 應用與環境生物學報，2003，9（2）：183-185.

LI M Q, LIN S J, XU B L, et al. Ecological and biological factors affecting[J]. Journal of applied and Environmental Biology, 2003, 9(2): 183-185.

[9] 李小杰，李淑君，李成軍，等. 鳶尾絲囊霉()引起的煙草漂浮苗根腐病的初步報道[J]. 中國煙草學報，2018，24（2）：125-128.

LI X J, LI S J, LI C J, et al. Preliminary report on tobacco seedling root rot induced byin floating bed[J]. Acta Tabacaria Sinica, 2018, 24(2): 125-128.

[10] 莫瑾，王哲，周慧平，等. 利用多重PCR技術快速檢測4種水稻病原細菌[J]. 植物保護，2021，47（3）：160-164.

MO J, WANG Z, ZHOU H P, et al. A multiplex PCR rmethod for rapid detection of four rice pathogenic bacteria[J]. Plant Protection, 2021, 47(3): 160-164.

[11] 程承，李石力，劉穎，等. 試驗土壤中煙草青枯病菌的RT-qPCR檢測分析[J]. 煙草科技，2017，50（1）：12-16.

CHENG C, LI S L, LIU Y, et al. RT-qPCR detection and quantitative analysis ofin soil[J]. Tobacco Science & Technology, 2017, 50(1): 12-16.

[12] 陳杰，朱天輝. 核桃枝枯病小新殼梭孢巢式PCR檢測方法的建立[J]. 植物保護，2018，44（3）：124-129，162.

CHEN J, ZHU T H. Establishment of nested PCR method for detecting the branch dieback of walnut caused by[J]. Plant Protection, 2018, 44(3): 124-129，162.

[13] 肖艷松，鐘權，吳文信，等. 湖南煙草靶斑病的病原鑒定及分子檢測[J]. 湖南農業大學學報（自然科學版），2020，46（6）：711-715.

XIAO Y S, ZHONG Q, WU W X, et al. Pathogen identification and molecular detection of tobacco target spot in Hunan Province[J]. Journal of Hunan Agricultural University (Natural Sciences), 2020, 46(6): 711-715.

[14] 封松利. 河南省煙草黑脛病菌和根黑腐病菌群體遺傳多樣性分析及分子檢測體系的建立[D]. 鄭州：河南農業大學，2014..

FENG S L. Population genetic diversity and molecular detection ofandin Henan Province[D]. Zhengzhou: Henan Agricultural University, 2014.

[15] 李小杰，劉暢，李成軍，等. 基于RAPD分子標記的煙草青枯病菌特異引物篩選及效果評價[J]. 中國煙草學報，2021，27（2）：72-78.

LI X J, LIU C, LI C J, et al. Screening and evaluation of specific primers forbased on RAPD technology[J]. Acta Tabacaria Sinica, 2021, 27(2): 72-78.

[16] 張琳，彭琳，邵郅偉，等. 南瓜炭疽病菌生物學特性及藥劑防治[J]. 植物保護，2021，47（4）：59-65.

ZHANG L, PENG L, SHAO Z W, et al. Biological characteristics and indoor fungicide screening ofcausing pumpkin anthracnose[J]. Plant Protection, 2021, 47(4): 59-65.

[17] 唐德志，何蘇琴，李玉奇，等. 甘肅豌豆絲囊根腐病及其病原鑒定[J]. 植物保護，1991（4）：4-5.

TANG D Z, HE S Q, LI Y Q, et al. Pathogen identification of root rot on pea in Gansu Province[J]. Plant Protection, 1991(4): 4-5.

[18] ICHITANI T, HIGASHIKAWA T. Germination ofoospores on the basal medium for selective isolation with addition of bactericides and fungicides[J]. Proceedings of the Kansai Plant Protection Society, 1986(28): 19-24.

[19] 王曉杰，康振生，黃麗麗. PCR技術在植物病害檢測中的應用[J]. 云南農業大學學報，2005（2）：179-182.

WANG X J, KANG Z S, HUANG L L. Application of PCR technology on the detection of plant disease[J]. Journal of Yunnan Agricultural University, 2005(2): 179-182.

Biological Characteristics and Molecular Detection ofHarmful to Tobacco Seedlings

LI Xiaojie1, LIU Jianjun2, BAI Jingke1, LIU Chang1, CHEN Yuguo1, MIAO Pu3, QIU Rui1, LU Shiyu1, LI Shujun1*

(1. Tobacco Research Institute of Henan Academy of Agricultural Sciences, Key Laboratory for Green Preservation & Control of Tobacco Diseases and Pests in Huanghuai Growing Area, Xuchang, Henan 461000, China; 2. Henan Provincial Tobacco Company, Zhengzhou 450046, China; 3. Luoyang Branch of Henan Provincial Tobacco Company, Luoyang, Henan 471000, China)

In view of the serious occurrence of root rot caused byin tobacco seedling bed of Henan Province in recent years, this study was carried out to clarify the biological characteristics of the pathogen and fro rapid detection at early stages. The biological characteristics of the pathogen were studied with the mycelial growth rate method, and specific amplification primers forwere designed and screened for application based on the CDS sequences of five coding genes of the representative strain CBS 524.87 in NCBI database. The results showed that the suitable temperature for mycelium growth ofwas 25-35 ℃on PDA plates, and the lethal temperature was 50 ℃ for 10 min. The suitable pH forgrowth was 4.0-8.0 and the optimum pH was 6.0. Continuous light was beneficial to mycelium growth for. Seven pairs of primers were designed and screened for the specific amplification of, and the sensitivity to genomic DNA amplification was about 0.182 ng/μL.could be specifically detected by the specific primer pair AiT3 for molecular detection of inoculated seedling substrate and tobacco seedlings respectively, with the detection sensitivity being 2.5×10-2g hyphae of per gram of substrate and 0.5 ng/μL tobacco seedling root genomic DNA. The results of this study provide technical support for the rapid molecular detection of, and provide an important basis for the accurate identification and prediction of root rot caused byat seedling stages.

tobacco;; biological characteristics; specific primers; molecular detection

10.13496/j.issn.1007-5119.2022.06.008

S435.72

A

1007-5119（2022）06-0053-07

河南省農業科學院科技創新團隊專項項目（2022TD26）；
河南省煙草公司科技項目（2022410000240018）

李小杰（1983-），女，博士，助理研究員，主要研究方向為煙草病理學。E-mail：lixiaojie000631@sina.com

，E-mail：13603749396@126.com

2022-03-31

2022-08-19